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公司最新研發替抗産品—複合綠原酸
作者:管理員    發布于:2019-03-26 15:40:47    文字:【】【】【

公司最新研發替抗産品—複合綠原酸

仔豬從斷奶到70日齡的階段為保育階段,此階段的仔豬存在着諸如消化機能尚不成熟、消化酶活性低、胃排空時間短、免疫系統存在缺陷及體溫調節能力差等生理特點[1]。此外,仔豬還受到突然變化的飼糧結構的影響,由易消化吸收的液體母乳轉變為固體飼料,飲食結構發生改變。因此,斷奶會導緻仔豬腸道發生組織形态學和生理學上的變化,如腸絨毛萎縮、隐窩增生、腸粘膜通透性增強等,從而會引起仔豬消化和吸收功能下降,免疫機能降低,最終發生腹瀉和生長性能下降等[2]。大量研究表明,飼糧中添加抗生素、高銅、高鋅等可促進仔豬生長,緩解仔豬斷奶應激[3-4]。不過,雖然抗生素等添加物的大規模使用給養殖業帶來了巨大的效益,但其産生的污染環境、殘留及耐藥性等弊端日益凸顯。因此,在飼糧中取消抗生素及限制高銅、高鋅使用的呼聲日益高漲,新型綠色飼料添加物的研發也同時引起了人們的廣泛關注。

綠原酸(chlorogenic acidCA)系一種縮酚酸,源于多種植物,是植物在有氧呼吸過程中通過莽草酸循環途徑,由咖啡酸和奎尼酸經過縮合反應而生成的一種次生代謝産物[5]。根據日前的研究報道,CA具有極其廣泛的生物學活性,包括抗菌、抗炎、抗病毒及抗氧化等[6-7]。劉英等[8]研究發現,在三元雜交斷奶仔豬飼糧中添加CA後,仔豬抗氧化能力得到增強。劉則學等[9]報道,在規模化豬場飼養的斷奶仔豬飼糧中添加CA後,料重比(F/G)顯著降低,腹瀉頻率明顯降低,每千克增重成本降低。這表明,在飼糧中添加CA有助于斷奶仔豬的生長,提高經濟效益。但是,目前關于添加CA在斷奶仔豬的應用還較少,且效果更是不完全明确。因此,本試驗旨在研究飼糧添加不同劑量CA對斷奶仔豬生長性能、血清免疫球蛋白含量以及腸道黏膜形态與消化吸收能力的影響,評估其能否促進斷奶仔豬腸道健康,增強免疫功能,改善生長性能,為CA在豬養殖生産中的應用提供科學依據。

材料與方法

1.1  試驗材料

試驗動物為健康杜×長×大三元雜交閹割公豬,購于四川鐵騎力士實業有限公司;試驗所用CA為合成品(純度99.5%),由四川君正生物飼料有限公司提供。

1.2  試驗設計及飼糧

試驗在四川農業大學動物營養研究所基地進行。選擇平均體重為(9.45±0.20kg的仔豬24頭,依據體重一緻原則随機分為4組,即對照組(飼喂基礎飼糧)、CA250組(飼喂基礎日糧+250mg/kg CA)、CA500組(飼喂基礎日糧+500mg/kg CA)和CA1000組(飼喂基礎日糧+1000mg/kg CA),每組6個重複,每個重複1頭豬,單籠飼養。試驗期為14d。每天分别于0800120016002000飼喂,共4次,自由采食,充足飲水。仔豬飼糧參照NRC2012)豬營養需要進行配制,基礎飼糧組成及營養水平見表1

1 基礎飼糧組成及營養水平(風幹基礎)

Table 1  Composition and nutrient levels of the basal dietair-dry basis %

項目Items

含量Content

原料Ingredients

 

普通玉米Corn

26.50

膨化玉米Extruded corn

25.45

大豆粕Soybean meal

11.50

膨化大豆Extruded soybean

12.50

大豆濃縮蛋白Soybean protein concentrate

5.00

魚粉Fish meal

4.00

乳清粉Whey powder

7.00

豆油Soybean oil

1.50

葡萄糖Glucose

4.00

食鹽NaCl

0.30

石粉Limestone

0.65

磷酸氫鈣CaHPO4

0.60

氯化膽堿Chloride choline

0.10

L-賴氨酸鹽酸鹽L-Lys HCl

0.30

DL-蛋氨酸DL-Met

0.08

蘇氨酸Thr

0.06

色氨酸Trp

0.02

維生素預混料Vitamin premix1)

0.04

礦物元素預混料Mineral premix1)

0.40

合計Total

100.00

營養水平Nutrient leverl2)

 

消化能DE/MJ/kg

14.86

粗蛋白質CP

19.80

Ca

0.92

總磷TP

0.55

有效磷AP

0.37

總賴氨酸Total Lys

1.41

總蛋氨酸Total Met

0.47

總蘇氨酸Total Thr

0.79

總蛋氨酸+半胱氨酸Total Met+Cys

0.75

總色氨酸Total Trp

0.22

1預混合為每千克飼糧提供The premix provided the following per kg of the dietVA 6000 IUVD3 400 IUVE 10 IUVK3 2.0 mgVB1 0.80 mgVB2 6.4 mgVB6 2.4 mgVB12 12 ug 葉酸folic acid 0.20 mg,煙酸nicotinic acid 14 mgD-泛酸D-pantothenic acid 10 mgFe as ferrous sulfate120mgCuas copper sulfate6 mgMnas manganese sulfate40mgZnas zinc sulfate100mgIas potassium sulfate0.30mgSeas sodium sulfate0.30mg

2消化能為計算值,其餘為實測值。DE was a calculated valuewhile the others were measured values.

1.3  測定指标及方法

1.3.1  生長性能

試驗正式開始第1天早晨,仔豬空腹稱重,試驗期每日記錄每頭豬的采食情況,包括每日喂料量、剩餘料量及浪費料量,第14天清晨再次對仔豬空腹稱重。計算仔豬的平均日增重(ADG)、平均日采食量(ADFI)及F/G

1.3.2  血清免疫球蛋白含量

于試驗第14天清晨空腹采集前腔靜脈血10mL,靜置30min後,以3500r/min離心10min,取上層血清保存于-20℃,用于測定血清免疫球蛋白AIgA)、免疫球蛋白GIgG)及免疫球蛋白MIgM)含量。測定采用北京誠林生物科技有限公司的酶聯免疫吸附試驗(ELISA)試劑盒,嚴格按照試劑盒說明書操作。

1.3.3  腸道黏膜形态

試驗結束屠宰後,迅速分别取十二指腸、空腸及回腸中段各1cm左右組織,用4%多聚甲醛固定。常規制作石蠟包埋組織塊,制作組織切片,厚度為5μm,用蘇木精-伊紅染色法染色并封片。于光學顯微鏡下觀察拍照,随機選取10個視野測定絨毛高度和絨毛寬度以及隐窩深度,并計算絨毛高度/隐窩深度(V/C)值。

1.3.4  腸黏膜二糖酶活性

屠宰後迅速分别取十二指腸、空腸及回腸腸段,剖開并棄去腸内容物,用生理鹽水沖洗,濾紙吸幹殘餘水分。用玻片刮取黏膜組織,分裝于凍存管并暫存于-80℃。分别稱取适量黏膜組織至勻漿器中,按黏膜重量以1:9比例加入冷生理鹽水,在冰浴條件下制成黏膜組織勻漿液。将勻漿液轉移至離心管,4℃、3500r/min離心15min,取上清液分裝于0.5mL離心管中,-20℃保存,用于蔗糖酶及麥芽糖酶這2種二糖酶活性的測定。測定采用南京建成生物工程研究所試劑盒,嚴格按說明書操作。

1.3.5  腸道葡萄糖轉運蛋白基因表達

采用實時熒光定量PCR法檢測腸道鈉-葡萄糖協同轉運蛋白1SGLT1)、葡萄糖轉運蛋白2GLUT2)這2種葡萄糖轉運蛋白的基因表達,所用試劑盒購自天根生化科技有限公司。主要方法如下:取十二指腸、空腸及回腸黏膜組織,用Trizol試劑提取黏膜總RNA,核酸檢測儀測定吸光度(OD260、(OD280及(OD320值,并計算樣品RNA濃度與純度。cDNA合成按照試劑盒說明書進行,2種目的基因與内參基因β-肌動蛋白(β-actin)的引物序列詳見表2SYBR Green實時熒光定量PCR體系按試劑盒說明書操作。PCR反應條件為:95℃,1min95℃,5s;按表2中的退火溫度,35s;共45個循環。用2-△△Ct法計算2種目的基因的相對表達量。

2 實時熒光定量PCR引物序列

Table2  Primer sequences for quantitative real-time PCR

基因                                              Genes

引物序列                                                              Primer sequences5’—3’)

退火溫度  Tm/

産物大小       Product size/bp

-葡萄糖協同轉運蛋白1 SGLT1

FTGTATTTGAGGCCAGTGTCA                 RGGGCACCACAACTCTTAAA

55.7

198

葡萄糖轉運蛋白2                     GLUT2

FTGGAATCAGCCAACCTGTTT                 RACAAGTCCCACCACATGA

55.7

165

β-肌動蛋白                             β-actin

FTCTGGCACCACACCTTCT                       RTGATCTGGGTCATCTTCTCAC

55.7

114

1.4  數據統計分析

試驗數據采用SPSS19.0統計軟件進行單因素方差分析(one-way ANOVA),用Duncan氏法進行多重比較,以P0.05為差異顯著,結果以平均值±标準差表示。

結果

2.1  CA對仔豬生長性能的影響

由表3可知,各組間ADGADFI均無顯著差異(P0.05),但CA1000ADGADFI較對照組略有上升;CA250組合CA500F/G與對照組無顯著差異(P0.05),但CA1000F/G顯著低于對照組(P0.05)。

3  CA對仔豬生長性能的影響

Table3  Effects of CA on growth performance of piglets

項目

Items

組别Groups

對照Contorl

CA250

CA500

CA1000

平均日增重ADG/kg

0.41±0.01

0.44±0.06

0.45±0.01

0.47±0.01

平均日采食量ADFI/kg

0.67±0.07

0.69±0.08

0.68±0.02

0.70±0.04

料重比F/G

1.58±0.04a

1.53±0.03ab

1.53±0.01ab

1.44±0.02b

同行數據肩标無字母或相同小寫字母表示差異不顯著(P0.05),不同小寫字母表示差異顯著(P0.05),不同大寫字母表示差異極顯著(P0.01.小表同。

In the same rowvalues with no letter or the same letter superscripts mean no significant differenceP0.05),while with different small letter superscripts mean significant differenceP0.05),and with different capital letter superscripts mean extremely significant differenceP0.01.The same as below.

2.2  CA對仔豬血清免疫球蛋白含量的影響

由表4可知,各組間血清IgA含量均無顯著差異(P0.05),但CA1000組較對照組略有升高;CA250組和CA500組血清IgG含量與對照組相比無顯著差異(P0.05),但CA1000組血清IgG含量顯著高于對照組和CA250組(P0.05);各組間血清IgM含量均無顯著差異(P0.05)。

4  CA對仔豬血清免疫球蛋白含量的影響

Table4  Effects of CA on serum immunoglobulin content of piglets

項目

Items

組别Groups

對照Contorl

CA250

CA500

CA1000

免疫球蛋白A IgA

0.81±0.07

0.81±0.06

0.83±0.04

0.86±0.06

免疫球蛋白G IgG

2.46±0.26a

2.41±0.20a

2.49±0.40ab

2.75±0.53b

免疫球蛋白M IgM

0.21±0.04

0.22±0.04

0.17±0.03

0.18±0.03

2.3  CA 對仔豬腸道黏膜形态的影響

由表5可知,在十二指腸,試驗組絨毛高度均較對照組增加,其中CA1000組顯著高于對照組(P0.05);試驗組絨毛寬度較對照組有增加趨勢(P0.05);試驗組隐窩深度顯著低于對照組(P0.05);試驗組V/C值均較對照組增加,其中CA500組和CA1000組顯著高于對照組(P0.05),且2組間差異顯著(P0.05)。在空腸,CA1000組空腸絨毛高度和絨毛寬度均較對照組顯著增加(P0.05);各組間空腸隐窩深度及V/C值均無顯著差異(P0.05)。在回腸,各組間絨毛高度、絨毛寬度、隐窩深度及V/C值均無顯著差異(P0.05)。

5  CA對仔豬腸道黏膜形态的影響

Table5  Effects of CA on intestinal mucosa morohology of piglets

項目

Items

組别Groups

對照Contorl

CA250

CA500

CA1000

十二指腸Duodenum

 

 

 

 

絨毛高度Villus height/um

308.46±14.87a

317.56±12.67a

337.93±21.65a

433.54±12.99b

絨毛寬度Villus width/um

112.09±4.47

111.89±5.83

122.51±4.22

125.32±5.16

隐窩深度Crypt depth/um

217.33±4.24a

191.37±7.23b

182.89±6.80b

174.76±6.04b

絨毛高度/隐窩深度V/C

1.42±0.07a

1.66±0.04ab

1.84±0.06b

2.49±0.14c

空腸Jejunum

 

 

 

 

絨毛高度Villus height/um

212.47±13.44a

219.62±13.82ab

229.65±7.10ab

246.46±2.37b

絨毛寬度Villus width/um

109.17±3.41a

107.63±1.14a

112.26±3.36ab

117.82±0.85b

隐窩深度Crypt depth/um

177.11±6.21

185.04±5.74

174.94±9.12

172.09±12.84

絨毛高度/隐窩深度V/C

1.29±0.11

1.20±0.11

1.33±0.09

1.46±0.13

空腸Ileum

 

 

 

 

絨毛高度Villus height/um

234.04±4.05

232.91±8.91

234.45±11.73

246.92±9.88

絨毛寬度Villus width/um

95.71±4.00

97.38±5.40

99.33±3.94

102.93±5.15

隐窩深度Crypt depth/um

133.96±1.50

133.66±6.15

133.69±4.71

133.78±2.94

絨毛高度/隐窩深度V/C

1.74±0.04

1.76±0.15

1.77±0.14

1.86±0.10

2.4  CA對仔豬腸黏膜二糖酶活性的影響

由表6可知,在十二指腸,試驗組蔗糖酶活性均較對照組有所增加,但無顯著差異(P0.05);試驗組麥芽糖酶活性均較對照組顯著升高(P0.05),且CA250組與CA1000組間差異顯著(P0.05)。在空腸中,各組間蔗糖酶活性無顯著差異(P0.05);試驗組麥芽糖酶活性較對照組有所上升,但組間差異不顯著(P0.05)。在回腸中,各組間蔗糖酶活性無顯著差異(P0.05);CA500組麥芽糖酶活性顯著高于CA250組(P0.05),CA1000組麥芽糖酶活性較對照組及CA250組顯著增加(P0.05)。

6  CA對仔豬腸道黏膜二糖酶活性的影響

Table6  Effects of CA on intestinal mucosa disaccharidase activity of piglets U/g prot

項目

Items

組别Groups

對照Contorl

CA250

CA500

CA1000

十二指腸Duodenum

 

 

 

 

蔗糖酶Sucrase

27.53±3.31

36.94±4.21

39.52±3.77

39.11±3.92

麥芽糖酶Maltase

71.58±2.84a

110.61±2.97b

135.14±9.34bc

143.25±12.81c

空腸Jejunum

 

 

 

 

蔗糖酶Sucrase

243.73±9.38

244.61±37.60

241.00±22.85

239.26±36.82

麥芽糖酶Maltase

270.35±24.45

271.82±36.46

284.56±16.65

302.54±50.54

回腸Ileum

 

 

 

 

蔗糖酶Sucrase

90.70±0.86

80.80±8.76

87.10±12.80

88.49±4.98

麥芽糖酶Maltase

115.27±13.62ab

103.04±3.68a

147.89±15.23bc

177.93±13.07c

2.5  CA對仔豬腸道葡萄糖轉運蛋白基因表達的影響

由表7可知,各組間十二指腸SGLT1GLUT2基因相對表達量均無顯著差異(P0.05)。各組間空腸SGLT1基因相對表達無顯著差異(P0.05);但空腸GLUT2基因相對表達量有差異,CA250GLUT2基因相對表達量較對照組顯著降低(P0.05),CA1000GLUT2基因相對表達量較對照組顯著增加(P0.05)。試驗組回腸SGLT1基因相對表達量均較對照組有所增加,且CA1000組顯著高于C組(P0.05),但各組間GLUT2基因相對表達量無顯著差異(P0.05)。

7  CA對仔豬腸道葡萄糖轉運蛋白基因表達的影響

Table7  Effects of CA on expression of intestinal mucosa glucose transporter genes of piglets

項目

Items

組别Groups

對照Contorl

CA250

CA500

CA1000

十二指腸Duodenum

 

 

 

 

-葡萄糖協同轉運蛋白1 SGLT1

1.00±0.17

1.10±0.24

1.13±0.09

1.16±0.09

葡萄糖轉運蛋白2 GLUT2

1.00±0.09

1.14±0.25

1.02±0.06

0.84±0.10

空腸Jejunum

 

 

 

 

-葡萄糖協同轉運蛋白1 SGLT1

1.00±0.06

0.99±0.05

1.06±0.20

1.16±0.02

葡萄糖轉運蛋白2 GLUT2

1.00±0.12a

0.53±0.03b

0.74±0.06ab

1.28±0.10c

回腸Ileum

 

 

 

 

-葡萄糖協同轉運蛋白1 SGLT1

1.00±0.04a

1.24±0.16ab

1.23±0.19ab

1.45±0.04b

葡萄糖轉運蛋白2 GLUT2

1.00±0.14

1.01±0.22

0.97±0.12

0.73±0.11

3讨論

3.1  CA對仔豬生長性能的影響

根據目前的研究報道,飼糧中添加CA在改善水産動物生長性能方面具有較好的效果。張純等[10]的研究表明,在飼糧中添加200mg/kgCA能顯著促進建鯉生長,提高增重率。李乃順等[11]發現,草魚攝食含0.04%CA的飼料後,增重率提高16.4%,飼料系數降低13.1%。但也有添加CA無助于改善生長性能的報道,例如Wang[12]的研究表明,飼糧中添加100400mg/kg CA對凡納濱對蝦生長性能并無顯著影響。目前,關于CA對斷奶仔豬生長性能影響的研究已有一些報道,但效果尚不确定。劉英等[8]報道,用添加300mg/kg CA飼糧飼養斷奶仔豬4周,對ADGADFI及飼料轉化率均無顯著影響。賴星[13]的研究發現,飼糧中添加CA顯著提高斷奶仔豬的ADGADFI,明顯降低F/G。本試驗結果表明,添加CA雖然對斷奶仔豬ADGADFI無明顯影響,卻能顯著降低F/G。劉則學等[9]利用規模化豬場進行的大樣本(每組140頭豬)研究結果也表明,添加CA對斷奶仔豬ADGADFI無明顯影響,但顯著降低F/G,這與本試驗的結果基本一緻。CA促進仔豬等動物生長的作用機理目前尚不完全清楚,可能是:1CA具有腎上腺素樣作用,能提高中樞神經興奮性及消化道收縮能力,促進營養物質的吸收作用[14]2CA具有抗菌、抗病毒及抗炎症等作用[7],利于動物機體抵禦病原微生物的侵襲,保持良好的生長狀态;3CA具有抗氧化及清除體内自由基的作用[6-7],降低機體氧化應激水平,維持正常的氧化平衡狀态,從而利于動物健康生長。

3.2  CA對仔豬血清免疫球蛋白含量的影響

CA已被證實具有多種生物學活性,包括抗炎及其密切關聯的提高機體免疫力。張建華等[15]報道,CA可顯著增強小鼠的特異性免疫功能,細胞免疫與體液免疫能力均得到顯著提高。此外,CA還能增強動物的非特異性免疫功能。張純等[10]發現,在飼糧中添加CA可有效提高建鯉白細胞吞噬能力及血清溶菌酶活性,從而增強建鯉的非特異性免疫力。李乃順等[11]也報道,在基礎飼糧中添加CA能改善草魚魚種的溶菌酶等非特異性免疫指标。然而,目前關于CA對動物尤其是仔豬免疫球蛋白的影響所知較少。Gong[16]的研究表明,CA能增加小鼠體内免疫球蛋白EIgE)及IgG含量,并促進腸系膜淋巴結産生白細胞介素-4IL-4)。Lin[17]的荟萃分析資料顯示,CA能顯著提高血清IgG含量,增加IgG1抗體形成細胞數量。但王多伽等[18]報道,飼糧中添加CA對獺兔血清IgG含量并無明顯影響,這可能與動物種類及CA劑量等因素有關。本試驗結果表明,飼糧中添加CA對仔豬血清IgAIgM含量無顯著影響,但高劑量CA添加能夠顯著增加仔豬血清IgG含量。衆所周知,IgG是血清中含量最高的免疫球蛋白,是介導體液免疫的主要抗體,在抗菌與抗病毒等免疫功能中扮演重要角色。本試驗中仔豬血清IgG含量的提高,表明飼糧中添加CA在一定程度上能提高仔豬免疫功能。CA增強動物免疫功能的作用機理可能是:直接促進機體免疫器官如胸腺、脾髒等的生長發育[13],從而提高機體免疫力;通過激活鈣調神經磷酸酶介導的信号通路,增強巨噬細胞等的吞噬功能[19];促進機體IL-4的合成與分泌[16]IL-4增加一方面利于B淋巴細胞的增殖分化,提升免疫球蛋白産生能力,另一方面促進CD4+ T淋巴細胞分化為Ⅱ型輔助T淋巴細胞,從而增強機體的體液免疫與細胞免疫能力。

3.3  CA對仔豬腸道黏膜形态的影響

小腸最基本的功能是腸黏膜對營養物質的消化吸收,其功能強弱與腸黏膜組織結構的絨毛高度、隐窩深度以及V/C密切相關。Montagne[20]報道,腸黏膜的絨毛變長、隐窩變淺或V/C值增加,通常表示消化吸收功能增強,反之則代表消化吸收功能降低。迄今為止,關于CA對動物腸道黏膜形态影響的研究極少。Ruan[21]的研究發現,在SD大鼠飼糧中添加CA飼喂斷奶大鼠15d後,大鼠空腸絨毛高度顯著高于對照大鼠,空腸、回腸隐窩深度均顯著低于對照大鼠,空腸、回腸V/C值均顯著高于對照大鼠。提示,在飼糧中添加CA能改善斷奶大鼠腸黏膜形态。在本試驗中,用分别添加3種不同水平CA的飼料喂養斷奶仔豬14d後,十二指腸和空腸黏膜的絨毛高度、絨毛寬度及V/C值較對照組增加,而隐窩深度較對照組降低,并與添加CA的水平有關,添加高劑量CA引起的變化更顯著。提示添加CA有利于斷奶仔豬腸黏膜形态的改善;此外,絨毛高度與寬度的增加勢必提升腸黏膜的有效吸收面積,促進吸收功能,這也與上述Ruan[21]在斷奶大鼠的研究結果基本一緻。由于目前有關CA對腸黏膜形态影響的研究極少,尚不清楚CA改善腸黏膜形态的作用機理。推測一方面與CA的抗氧化作用有關[6-7],通過降低氧化應激水平而避免腸道受氧化損傷,以維護腸黏膜形态的完整性;另一方面CA能增加腸道緊密連接蛋白表達,降低其通透性[21],從而維護腸道屏障及黏膜形态;此外,CA能有效地維持腸道微生物群落的多樣性,保護腸道微生态平衡[13],這也利于腸黏膜的生長。

3.4  CA對仔豬腸道消化吸收能力的影響

對包括糖在内的營養物質的消化吸收是動物生命活動的基礎。動物飼糧的可消化碳水化合物主要包括多糖、寡糖、二糖和單糖,多糖與寡糖必須由消化酶将其轉變為二糖,再由腸黏膜的二糖酶水解成葡萄糖等單糖後,才能被吸收利用。因此,腸黏膜麥芽糖酶、蔗糖酶等二糖酶是糖類營養物質最終消化的關鍵消化酶,被認為是腸道功能發育成熟的标志之一[22]。關于CA對動物腸黏膜二糖酶的影響,目前尚未見相關報道。本試驗中,飼糧中添加CA後,仔豬十二指腸蔗糖酶活性較對照組有增加趨勢,麥芽糖酶活性顯著高于對照組;空腸麥芽糖酶較對照組有上升;回腸麥芽糖酶活性顯著高于對照組。這表明,CA能促進仔豬小腸黏膜二糖酶活性,有助于糖類營養物質被消化為單糖。

單糖中絕大部分為葡萄糖,它在小腸内的吸收與轉運主要是通過位于腸黏膜上皮細胞上的2類跨膜葡萄糖轉運載體——SGLT1GLUT2來共同完成的。SGLT1與鈉泵偶聯,以耗能的主動轉運方式,逆濃度梯度轉運吸收腸腔内葡萄糖進入腸黏膜上皮細胞;此外,它還可通過激活依賴蛋白激酶C的信号通路調節GLUT2對葡萄糖的轉運[23]GLUT2則是以不耗能的被動轉運方式,順濃度梯度将腸黏膜上皮細胞的SGLT1GLUT22種葡萄糖轉運載體在葡萄糖的吸收過程中起着及其重要的作用。目前關于CASGLT1GLUT2影響的研究極少,僅在高脂飼喂動物有零星報道。梁秀慈等[24]與彭冰潔等[25]分别報道,CA能引起高脂乳劑飼喂昆明小鼠及SD大鼠骨骼肌GLUT4 mRNA表達顯著增加。Peng[26]的研究表明,CA降低高脂飼喂大鼠空腸SGLT1 mRNA與蛋白表達,對十二指腸、空腸及結腸SGLT1無顯著影響,增加十二指腸、空腸及回腸GLUT2 mRNA表達。本試驗結果表明,高劑量CA能顯著增加仔豬空腸GLUT2及回腸SGLT1 mRNA表達,提示飼糧中添加高劑量CA對小腸葡萄糖的吸收與轉運有一定的促進作用。關于CA增加腸黏膜葡萄糖轉運載體表達的作用機理目前尚不清楚,我們推測可能與CA促進腸黏膜絨毛生長有關。因為Dong[27]發現,小腸葡萄糖轉運載體的基因表達與絨毛高度呈正相關,絨毛越長,表達量越多。也可能還有其他作用機理,這有待進一步研究明确。

結論

綜合本試驗條件下的各指标,建議斷奶仔豬飼糧中添加CA的适宜添加量為1000mg/kg。添加該劑量CA能顯著降低仔豬F/G,增強免疫功能,改善小腸形态與消化吸收能力,從而提高斷奶仔豬生長性能。

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